Как выполнять забор крови на стерильность: СОП

Кровь

· Отбор крови следует осуществлять «на подъёме температуры».

· Пробы крови следует получать путём венепункции перефирических вен (чаще всего вены локтевого изгиба), как детям, так и взрослым.

· Объём крови необходимый для посева: у взрослых следует взять 10 мл крови, у детей 0,1-4,0 мл.

· С верха пробки необходимо снять пластиковую защитную пластину, обработать её салфеткой, смоченной 70% этанолом и дать высохнуть.

· Участок кожи над сосудом, выбранным для пункции, обработать салфеткой, смоченной 70% этанолом, или другим антисептиком, разрешенным к применению для этих целей в установленном порядке, круговыми движениями начиная от центра, на протяжении 30 секунд.

· Подождать, пока высохнет обработанный участок.

Процедура посева при заборе крови при помощи шприца

· Выполнить венепункцию и перенести кровь во флакон сменив иглу и спустив из нее воздух.

· Если необходимо выявить аэробные и анаэробные микроорганизмы, то кровь следует внести сначала в анаэробную ёмкость, а потом в аэробную для того что бы кислород , который накопился в шприце не попал во флакон для анаэробов;

· При заполнении флакона необходимо ориентироваться на метку объёма на этикетке. При достижении необходимого объёма заполнения следует удалить шприц, поскольку через вакуум автоматически отберётся количество более рекомендуемого максимума. Для избежания нарушения вакуума необходимо прокалывать пробку флакона в вертикальном положении.

· Место прокола сосуда заклеить лейкопластырем, после этого пациенту слудет согнуть руку в локте.

Процедура посева при непосредственном отборе крови путём венепункции.

· Отберите кровь при помощи системы забора крови с иглой-бабочкой и адаптером для взятия крови во флакон для культивирования.

· При одновременном посеве во флакон для культур крови BacT/ALERT нескольких типов (с использованием систем забора крови с иглой-бабочкой и адаптера для непосредственного отбора крови) сначала, необходимо вносить образец во флакон для выделения аэробных микроорганизмов, а потом — для выделения анаэробных организмов, что бы кислород, который накопился в трубке, не попал во флакон для выделения анаэробных микроорганизмов.

· Что бы избежать посева чрезмерного объёма, отслеживайте объём крови который набирается во флакон. Для наполнения флакона приблизительно на 10 мл ориентируйтесь по линии уровня заполнения на этикетке флакона, или же при помощи метки объёма с шагом 5 мл на этикетке флакона для оценки объёма внесённого образца.

· В ходе всей процедуры тщательно контролируйте процесс непосредственного отбора, обеспечивая надлежащий поток и не допуская попадания содержимого флакона в трубку адаптера. Поскольку во флаконе для культивирования содержатся химические добавки, важно следовать указанной выше пошаговой процедуре, что бы не допустить возможный обратный поток.

· Держите флакон для культвирования ниже руки пациента в вертикальном положении (пробкой вверх).

· Отпустите жгут, как только кровь начнёт поступать во флакон для культивирования, или на протяжении 1 минуты после его наложения.

· Проследите за тем, что бы содержимое флакона не касалось пробки или конца иглы во время забора крови

· Место прокола сосуда заклеить лейкопластырем, после, пациенту следует согнуть руку в локте.

Особенности посева крови у детей.

· Посев осуществляется по методикам описаными выше, во флаконы с зеленой крышкой.

· Рекомендованый объём крови 4,0 мл. Минимальный объём крови 0,1 мл.

· При заполнении флакона необходимо ориентироваться на метку объёма 4,0 мл на этикетке.

Не допускается:

· Пальпирование сосуда после обработки кожи перед введением иглы.

· Вдавливания поршня шприца с усилием при выполнении посева, так как может произойти разбрызгивание образца.

· Осуществление посева во флакон с нарушенным вакуумом.

Спинномозговая (ликвор), синовиальная, плевральная и другие стерильные жидкости.

· Перед проведением пункции и чрескожной аспирации следует тщательно очистить выбранный участок кожи 70% этанолом; продезинфицировать 1-2% раствором йода или другим дезинфектантом, разрешенным к применению для данных целей, для предотвращения инфекции. Избыток йода удалить марлевой салфеткой, смоченной 70% этанолом, чтобы избежать ожога кожи пациента.

· Ликвор получают путем люмбальной пункции с субарахноидального пространства между позвонками L3 — L4, L4 — L5 или L5 — S1, а также путем пункции боковых желудочков мозга и вносят во флакон со средой.

· Соблюдая правила асептики, выполняют чрескожная аспирация для получения проб плевральной, перикардиальной, перитонеальной или синовиальной жидкости. Полученную жидкость вносят во флакон.

Отбор стерильных жидкостей и биоптатов для посева на мицелиальные грибы.

· Кровь отбирают 2 раза в день в течение 2 дней.

· Отбор крови должен проводиться двумя медицинскими работниками в процедурном кабинете или у постели больного.

· Пробы крови следует получать путем венепункции периферических вен (чаще всего вены локтевого сгиба), у новорожденных — из пятки.

· Подождать, пока высохнет обработанный участок.

· Первый работник выполняет венепункцию. Второй работник, у пламени спиртовой горелки открывает флакон. Первый — вносит кровь во флакон со средой Сабуро, второй — закрывает флакон.

· Место прокола заклеить лейкопластырем, после чего пациенту следует согнуть руку в локте.

Не допускается:

Пальпация сосудов после обработки кожи перед введением иглы.

Содержание

Забор крови на стерильность: алгоритм

Бактериологический посев крови на стерильность выявляет наличие бактериемии. После этого выделяется гемокультура патогенного микроорганизма.

В рекомендации привели инструкцию по выполнению сестринской манипуляции «Забор крови на стерильность».

↯ Больше статей в журнале «Главная медицинская сестра» Активировать доступ

Каких возбудителей можно выявить анализом на стерильность

Основные возбудители, которых определяют с помощью анализа на стерильность:

бактерии семейства кокки — стафилококки, стрептококки, гонококки, пневмококки, менингококки и другие;
энтеробактерии — клебсиелла, сальмонеллы, кишечная палочка и другие;
дрожжевые и дрожжеподобные грибы;
палочка Коха.

Инфекционная безопасность и инфекционный контроль. Тесты скачать в PDF

Открыть документ сейчас

В зависимости от разновидности бактерий, которых обнаружили при исследовании, у пациента могут диагностировать:

Менингит — инфекционно-воспалительная патология оболочек головного мозга и спинного мозга.
Пиодермию — кожное воспаление, спровоцированное гноеродными кокками — стафилококками и стрептококками, — проникнувшими в кровь через повреждения на коже.
Остеомиелит — воспалительное поражение костного мозга с вовлечением костей. Носит гнойно-некротический характер, грозит осложнениями опорно-двигательного аппарата. В 90% случаев возникает при инфицировании золотистым стафилококком.
Туберкулез — инфицирование палочкой Коха. Наиболее часто встречается легочная форма заболевания. Также могут быть поражены кости, почки, мочевой пузырь, периферические лимфоузлы.
Сепсис — смертельно опасная вторичная гнойная инфекция, вызванная грамположительными кокковыми бактериями или грамотрицательными патогенами — синегнойной и кишечной палочкой, клебсиеллой. Летальность составляет от 15 до 45%.
Эндокардит — воспаление соединительнотканной оболочки сердца, стафилококковой либо энтерококковой природы происхождения.

Как провести аудит системы безопасности медизделий — посмотрите в Системе Главный врач

Как провести аудит системы безопасности медизделий - посмотрите в Системе Главный врач Открыть документ сейчас

Показания для взятия крови на стерильность у разных групп пациентов

У взрослых

длительная субфебрильная температура тела без изменения самочувствия;
заболевания, связанные с иммунодефицитом — СПИД, ВИЧ;
предоперационная подготовка;
постоперационный период;
специфическая симптоматика, не поддающаяся ликвидации с помощью антибактериальной терапии;
наличие имплантата в теле;
хронический фурункулез и другие патологии, сопровождаемые гнойными инфильтратами;
клиническая картина сепсиса;
лихорадочные состояния неустановленной этиологии;
подозрение на инфекционные заболевания: брюшной тиф и паратифы, сальмонеллезы, бруцеллез, возвратный тиф, лептоспирозы, эпидемический менингит, пневмококковые инфекции, пищевые токсикоинфекции — при наличии лихорадки, стафилококковые и стрептококковые инфекции, сибирскую язву, туляремию, чуму.
перед постановкой на длительное время внутреннего катетера и после его удаления.

У новорожденных

пиретическая, 39-41°С, температура тела сразу после рождения;
осложненная беременность, например, инфицирование женщины стафилококковой инфекцией в перинатальный период;
наличие генетических аномалий, выявленных во время скрининга беременной либо после родоразрешения;
бактериальное воспаление дна пупочной ранки у младенца, омфалит;
при преждевременном скоротечном родоразрешении (по необходимости).

У пациентов с онкологией

после курсовой химиотерапии;
для диагностики предполагаемых бактериальных инфекций.

Программа эпидбезопасности: как подготовить, что включить в документ — смотрите в Системе Главная медсестра

Программа эпидбезопасности: как подготовить, что включить в документ - смотрите в Системе Главная медсестра Открыть документ сейчас

Подготовка пациента к забору крови на стерильность

Перед взятием крови на бактериологический посев нужно предварительно подготовить организм по правилам клинико-лабораторной экспертизы. Сообщите пациенту, что за 5-6 дней до планируемого анализа нужно прервать антибактериальную и противовирусную терапию, если она проводится, не использовать любые лечебные и профилактические средства. Если это невозможно, кровь нужно брать на спаде концентрации антибиотиков в ней, то есть перед очередным введением препарата.

Для подтверждения бактериемии и исключения контаминации микрофлорой кожных покровов в процессе венепункции, берите кровь в два набора флаконов из двух вен с интервалом не более 30 минут.

Запрещено брать кровь из подключичного катетера. Исключение — подозрение на катетер-ассоциированный сепсис. В этом случае берите кровь из интактной периферической вены и через подозрительный катетер.

Внимание: по показаниям взрослому пациенту можно сделать внутривенную инъекцию адреналина за 30 минут до взятия крови. При повышении адреналинового уровня сужаются кровеносные сосуды брюшной полости и ускоряется циркуляции крови — это вызывает мощный выброс бактерий в кровоток. Такая провокация позволяет определить максимальную концентрацию микроорганизмов.

Алгоритм выполнения забора крови на стерильность

Кровь для бактериологического исследования на стерильность берите по алгоритму:

Забор крови на стерильность: алгоритм

Скачать алгоритм >>

После взятия материала промаркируйте флакон. Укажите в бланке данные о пациенте, диагноз и сведения о принимаемых антибиотиках, если их назначали до взятия крови, дату и время взятия пробы и отправьте в лабораторию в термостате с температурой 37 °С.

В полной версии рекомендации рассказали, как правильно брать кровь на химико-токсикологический анализ.

Развернуть рекомендацию полностью в Системе Главная медсестра >>

СОП: Проведение забора крови на стерильность

Алгоритм проведения забора крови Проведение забора крови на стерильность — медицинская манипуляция, которая проводится медсестрой.

Для того, чтобы стандартизировать процедуру, воспользуйтесь предложенным СОП — подробный пошаговый алгоритм позволит персоналу не допустить ошибки, выполнить манипуляцию быстро и в строгом соответствии с технологией.

↯ Больше статей в журнале «Главная медицинская сестра» Активировать доступ

Определение

Анализ крови на стерильность проводят для того, чтобы диагностировать у пациента бактериемию (присутствие в крови бактерий), которая может свидетельствовать о том, что в организме происходят достаточно серьезные патологические процессы.

Ресурсы

Жгут для забора крови.
Стерильные спиртовые салфетки.
Стерильный шприц.
Стерильный халат, перчатки, маска.
Флакон с глюзным бульоном.
Спиртовка, спички.
Антисептическое мыло, кожный антисептик, бумажные салфетки.
КБСУ для медицинских отходов класса «Б».

Документирование

Бланк направления на исследование крови на стерильность.

Образцы и специальные подборки стандартных процедур для медицинских сестер, которые можно скачать в Системе Главная медсестра.

Скачать 10 СОПов >>

Основная часть процедуры

Подготовить оснащение, зафиксировать ФИО, дату рождения пациента, дату и время забора крови в бланке направления на исследование.
Представить себя пациенту.
Провести идентификацию пациента согласно внутренним правилам Больницы;
Объяснить цель и ход исследования и получить его согласие.
Помочь пациенту принять удобное положение для венепункции лежа или сидя (зависит от тяжести пациента).
Зажечь спиртовку.
Провести обработку рук согласно Методическим рекомендациям по обработке рук сотрудников медицинских организаций РК.
Надеть стерильный халат, перчатки, маску.
Наложить жгут в область средней трети плеча (под жгут подложить салфетку) и попросить пациента несколько раз сжать кулак, найти наиболее наполненную вену.
Обработать место спиртовыми салфетками 2-кратно, не пальпировать вену повторно
Туго натянуть кожу для стабилизации вены.
Выполнить пункцию кожи, затем пункцию боковой стенки вены; Альтернативный метод — одновременная пункция кожи и стенки вены.
Осторожно продвинуть иглу до появления в игле крови.
Набрать в шприц, соединенный с иглой от 5 до 10 мл крови (в зависимости от количества глюкозного бульона на 50 мл: 5 мл крови, на 100 мл:10 мл крови).
Удалить шприц с иглой из вены.
Открыть стерильный флакон левой рукой, соблюдая стерильность, обжечь горлышко над пламенем спиртовки.
Не касаясь стенок пробирки, выпустить медленно кровь из шприца во флакон;
Плотно закрыть флакон, обжигая пробку.
Утилизировать использованные салфетки в контейнер для сбора медицинских отходов класса «Б», шприц в КСБУ.
Снять перчатки и утилизировать в емкость для сбора медицинских отходов класса «Б»;
Обработать руки согласно методическим рекомендациям по обработке рук сотрудников медицинских организаций РК.
Помочь пациенту встать или лечь удобно (зависит от тяжести состояния пациента)
Установить стерильный флакон в контейнер, прикрепить направление и доставить в бактериологическую лабораторию. Если нет возможности сразу доставить флакон с кровью в бактериологическую лабораторию (ночное время, выходной день и т.д.), то его необходимо поместить в термостат при температуре +37°С.

Сборник СОПов для медицинских сестер процедурного кабинета

Примечание

Забор крови осуществляется в любое время на высоте температурной кривой, рекомендуется исключить прием жирной пищи накануне исследования

Осложнения после процедуры взятия крови:

сепсис;
инфекции кровотока (инфекции артерий или вен);
тромбоз вены;
гематома или кровотечение;
инфекции мягких тканей (некротический фасцилит, инфекционный миозит, лимфаденит, лимфангит, инфильтрат, абсцесс).

Риск инфекции можно свести к минимуму, соблюдая требования асептики и антисептики при проведении процедуры.

ВСЕ МАНИПУЛЯЦИИ В ПРОЦЕДУРНОМ КАБИНЕТЕ

Материал проверен экспертами Актион Медицина

Правила забора и посева крови на стерильность и гемокультуру

Промыть желудок больному ПТИ

При первых признаках пищевой токсикоинфекции (тошноте, рвоте, болях в животе, тенезмах, поносе) больному необходимо промыть желудок, попросив его выпить жидкость или введя ее в желудок через зонд. Процедуру можно повторить и в более поздние сроки при продолжающихся тошноте и рвоте. С этой целью используют 2%‑ный раствор гидрокарбоната натрия, слабый раствор марганцовокислого калия или обыкновенную кипяченую воду. Промывание осуществляют до тех пор, пока промывные воды не станут чистыми, без комочков непереваренной пищи и слизи. Частые рвота и жидкий стул приводят к обезвоживанию организма, поэтому больному в зависимости от тяжести его состояния назначается регидратационное лечение пищевой токсикоинфекции у детей с использованием регидрона, квартасоли, трисоли перорально. Инфузионная регидратационная терапия показана в более тяжелых случаях, при токсикозе с эксикозом, и в этом случае назначаются 5%‑ный раствор глюкозы, солевые растворы, раствор Рингера-Локка. Дезинтоксикационная терапия включает назначение гемодеза, полиглюкина, реополиглюкина, улучшающих кровообращение и снимающих симптомы интоксикации. Также назначаются жаропонижающие и противосудорожные средства, глюкокортикоиды. При сильном болевом синдроме назначаются спазмолитики.

особенности питания инфек.больных

Основные правила лечебного питания инфекционного больного

Основоположник отечественной диетологии М. И. Певзнер, разработал диету № 13 для инфекционных больных, и рекомендовал выполнять следующие правила при составлении рациона инфекционному больному:

Нельзя допускать, чтобы лихорадящий больной голодал. Он должен получать достаточное количество пищи, но маленькими порциями за один раз.

Всякое перекармливание противопоказано, даже если у больного есть аппетит.

По возможности следует исключать из рациона пищу, механически сильно раздражающую органы пищеварения.

Необходимо следить за функцией выделительных органов и при запорах включать в пищевой рацион продукты, действующие послабляющим образом (сахар, мед, соки сырых овощей, фруктов и ягод), а при поносах исключать молоко в чистом виде, холодные напитки и ограничить количество сахара.

При почечных симптомах необходимо исключать из рациона крепкие бульоны, экстрактивные вещества, пряности.

Необходимо учитывать состояние нервной системы больного, допуская введение в пищевой рацион только незначительного количества питательных веществ, раздражающих нервную систему (крепкий кофе, чай, очень крепкий бульон), или даже полностью их исключая.

При острых инфекциях значительно возрастает потребность организма в витаминах. Особую ценность представляют витамины, которые тем или иным образом влияют на состояние иммунитета. Наиболее богаты витамином С шиповник, черная смородина, цитрусовые, облепиха. Пищевые источники витамина А: печень, икра зернистая белужья, желток яйца, масло сливочное, твердые сыры. Витамин В2 (рибофлавин) в большом количестве содержится в субпродуктах, дрожжах, миндале, сырах, яйцах, твороге. Витамин В6 (пиридоксин) содержится в субпродуктах, мясе, фасоли, сое, рисе, пшене, картофеле. D улучшает состояние противотуберкулезного и противогрибкового иммунитета. Пищевые источники витамина D: жир из печени рыб и морских животных, лосось, сельдь, скумбрия, икра, тунец, яйцо, сливки, сметана.

Среди микроэлементов важнейшим для состояния иммунной системы является цинк, дефицит которого развивается при энтеритах, особенно у пациентов, злоупотребляющих алкоголем. Пищевые источники цинка: моллюски, грибы, яичный желток, печень, мясо. В бобовых, кунжуте, арахисе также много цинка, но он связан с фитиновой кислотой. Суточная потребность в цинке — 15-25 мг.

Этапы диетотерапии при инфекционном заболевании

На фоне высокой лихорадки вполне допустимо только питье утоляющих жажду напитков в течение 1-2 дней, не следует насильно заставлять больного принимать пищу. Если лихорадка продолжается более 5-7 дней, то необходимо назначитьэнтеральное или парентеральное питание.

При улучшении состояния больного после падения температуры тела часто отмечается повышение аппетита. Однако, не надо стремиться с самого начала его полностью удовлетворить, так как в первые 3-4 дня некоторое время отмечаются температурные колебания, нарушена выработка ферментов желудочно-кишечного тракта. Вот почему в эти 3-4 дня не следует резко расширять применяемую диету.

При дальнейшем расширении рациона наибольшее внимание должно быть уделено восполнению белковой и витаминной недостаточности. Применяется либо диета № 11 либо диета № 15. Количество белка в рационе должно составлять 1,5 г/кг идеальной массы тела, в то время как квота жиров и углеводов соответствует нормам рационального питания. Реконвалесцентам назначают диету с ограничением продуктов, возбуждающих центральную нервную систему (крепкий кофе, чай, крепкие бульоны, специи, шоколад) и продуктов, содержащих грубую клетчатку и эфирные масла (брюква, репа, чеснок, редис, редька). Не показаны торты, пирожные, изделия из песочного теста. Разрешают все виды кулинарной обработки: варка, тушение, запекание и жаренье без панировки. Режим питания 3-4-разовый.

Иногда у реконвалесцентов на фоне быстрого расширения диеты могут возникнуть диспепсические явления. В этом случае необходимо назначить разгрузочный день (вареные овощи без соли и масла, печеные яблоки) и проверить, правильно ли составлен пищевой рацион, учтено ли наличие у больного сопутствующих хронических заболеваний органов пищеварения, и при необходимости внести соответствующие коррективы.

Забор крови на брюшной тиф

Техника забора крови на посев. При строгом соблюдении стерильности набрать из локтевой вены в шприц «Рекорд» или Люэра 5-10 см3 крови, снять пинцетом иглу, обжечь канюлю шприца на спиртовом пламени и затем влить кровь в колбу со средой; горлышко колбы и пробку перед тем, как закрыть, обжечь. В качестве питательной среды употребляется или бульон, или желчь (50-100 см3 среды). Техника забора крови на агглютинацию (реакцию Видаля). Из мякоти пальца насосать 1,5-2 см3 крови в стерильную пастеровскую пипетку и по наполнении запаять или же набрать шприцем из локтевой вены 3-5 см3 крови, которую затем вылить в стерильную пробирку. Взятую кровь хранить в прохладном месте. При необходимости можно воспользоваться фильтровальной бумагой, для чего на бумажку размером в 5×10 см собрать 2-3 падающие капли крови, высушить на воздухе и в запечатанном конверте отослать для исследования в лабораторию. Техника забора испражнений. Посуда для сбора (судна, баночки и т. п.) не должна подвергаться химической обработке, а только кипячению. Для лучшего сохранения жизнеспособности микробов рекомендуется смешивать испражнения с равным объемом консерванта (30% раствор глицерина в физиологическом растворе).

Производится при тифо-паратифозных заболеваниях, сепсисе, менингококковой инфекции или других инфекциях, сопровождающихся лихорадкой, причем на протяжении всего лихорадочного периода болезни, но лучше в начальном периоде или в разгаре болезни (при выраженной бактериемии). Для исследования берут кровь из вены локтевого сгиба, у маленьких детей кровь берут в меньшем количестве из мочки уха, пятки, пальца. Пробы крови отбирают после тщательной обработки кожи с соблюдением правил асептики, одноразовым стерильным шприцем. Посев на питательные среды стерильного материала (кровь или другие, содержащие микробов жидкости у здоровых лиц) также лучше делать у постели больного, либо помещать в стерильную посуду, содержащую вещества, препятствующие свертыванию крови 0,3% раствора цитрата натрия, 0,1% раствор оксалата натрия). Обычно берут 5-10мл крови и засевают во флакон, содержащий 50-100 мл среды. Для этого используют для флакона с питательной средой (один для аэробов, другой для анаэробов). Посев крови производится на жидкие питательные среды — 10% желчный бульон, 1% сахарный бульон, двухфазную среду, а также жидкие и полужидкие среды для культивирования анаэробов в разведении 1:10. Флаконы с питательной средой получают в лаборатории, переливание крови из шприца во флакон необходимо производить над пламенем спиртовки, предварительно сняв иглу. Флакон с посевом направляется в лабораторию, а в вечернее и ночное время помещают в термостат. Студенту важно помнить, что тем раньше от начала заболевания производится посев. Тем больше шансов получить положительный результат. И, наоборот, чем позже взята кровь, тем меньшее количество возбудителя в ней находится и положительные результаты получаются реже. А при нормальной температуре — совсем редко. Следует знать, что для повышения числа положительных результатов гемокультуры рекомендуется, при отсутствии противопоказаний, за 15-20 минут для взятия крови ввести подкожно 1мл 0,1% раствора адреналина, что способствует сокращению селезенки и выходу в кровяное русло возбудителей (например, при тифозно-паратифозных заболеваниях) Предварительный результат посева при тифо-паратифозных заболеваниях получают через 2-3 дня, а окончательный — через 7-10 дней. Следует помнить, что увеличение кратности посевов крови (три дня подряд на подъеме температуры) значительно повышают частоту выделения микробов из крови. У леченных больных кровь для посева следует брать 5-6 раз.

Люмбальную пункцию проводит врач.

Медицинская сестра осуществляет: — подготовку инструментов; — подготовку больного; — помощь врачу при проведении манипуляции; — обеспечение правильного ухода за больным после проведения пункции.

Цель проведения люмбальной пункции — лечебная и диагностическая.

Оснащение. Стерильные ватные шарики, пинцет, 3% спиртовой раствор йода (йодинола), шприц 2,0 мл или 5,0 мл, две иглы, 0,5% раствор новокаина, игла для спинномозговой пункции с мандреном, стерильные пробирки, спирт, стерильные салфетки, лейкопластырь, стерильные резиновые перчатки, бланки направлений в клиническую и бактериологическую лабораторию.

1. Больного поместить в положение сидя, нагнувшись вперед, или лежа на боку с приведенными к животу коленями.

2. Обеззаразить руки, одеть стерильные резиновые перчатки.

3. Место пункции (точка между четвертым и пятым поясничными позвонками) и близлежащую площадь обработать спиртовым раствором йода (йодинолом).

4. Провести анестезию кожи новокаином.

5. Провести люмбальную пункцию: иглу с мандреном ввести в точку между остистыми отростками четвертого и пятого поясничных позвонков.

6. Снять мандрен (из иглы струйно или капельно должна вытекать жидкость) и подставить стерильную пробирку. Собрать необходимое количество жидкости на исследование.

7. Вставить в иглу мандрен и осторожно извлечь иглу.

8. Обработать место прокола и наложить стерильную повязку.

Примечание: — транспортировка больного в палату осуществляется в горизонтальном положении, лежа на животе, на каталке; — первые 2-3 часа больной должен лежать на животе без подушки; — строгий постельный режим обязателен в течение суток.

Соседние файлы в предмете [НЕСОРТИРОВАННОЕ]

Литература:

Moustafine R. I., Bobyleva V. L., Bukhovets A. V., Garipova V. R.,Kabanova T. V., Kemenova V. A., Van den Mooter G. Structural transformations during swelling of polycomplex matrices based on countercharged (meth)acrylate copolymers (Eudragit® EPO/Eudragit® L 100-55). Journal of Pharmaceutical Sciences. 2011; 100:874–885. DOI:10.1002/jps.22320.
https://imdlab.com.ua/ru/for-doctors/sterility_inoculation.
https://www.zdrav.ru/articles/4293662271-qsq-20-m09-14-zabor-krovi-na-sterilnost-algoritm.
https://www.zdrav.ru/articles/4293659226-sop-19-m01-05-provedenie-zabora-krovi-na-sterilnost.
https://studfile.net/preview/3220622/.
Pund A. U., Shandge R. S., Pote A. K. Current approaches on gastroretentive drug delivery systems. Journal of Drug Delivery and Therapeutics. 2020; 10(1): 139–146. DOI: 10.22270/jddt.v10i1.3803.
Moustafine R. I., Bukhovets A. V., Sitenkov A. Y., Kemenova V. A., Rombaut P., Van den Mooter G. Eudragit® E PO as a complementary material for designing oral drug delivery systems with controlled release properties: comparative evaluation of new interpolyelectrolyte complexes with countercharged Eudragit® L 100 copolymers. Molecular Pharmaceutics. 2013; 10(7): 2630–2641. DOI: 10.1021/mp4000635.